jueves, 26 de marzo de 2015



PRESENTACIÓN

¡¡¡ Hola hematomanic@s del mundo !!!, somos los alum@s de 1º  del Ciclo de Laboratorio de Diagnóstico Clínico, concretamente de la clase de Hematología; del IES Cantabria.Un instituto situado en el barrio de la Albericia, localizado en el Municipio de Santander de la C. A. de Cantabria; con una gran oferta en ciclos de formación profesional de la rama sanitaria (entre los que se encuentra el nuestro). Además de los determinados servicios y prestaciones, que cada uno de ellos requieren.Un ejemplo de los mismos, es el laboratorio donde llevamos a cabo nuestras prácticas. En el cual tenemos:



Una sala de microscopía: 



      Donde observamos las muestras que  preparamos y los frotis con ciertas patologías.



Una clase:


Donde los profesores y profesoras nos explican los protocolos de cada práctica antes de llevarlas a cabo, y donde comentamos los resultados de las mismas tras realizarlas.







Una zona de trabajo:

Donde preparamos todo el material necesario para realizar las prácticas.


Nuestra zona de trabajo


    En este espacio, también contamos con una gran variedad de instrumental  especializado:



Armarios con el material de laboratorio: matraces aforados,
embudos.vasos de precipitados,probetas, etc.



  Armario con los reactivos comunes.


   Detalle del armario con 
los reactivos comunes.


     
Baldas con los reactivos específicos de Hematología.


    Microscopio utilizado para hacer fotos y  vídeos 
de citología, o proyectar diapositivas 
sobre las muestras.



  Detalle de la cámara utilizada para hacer fotos de citología.


Estufa de secado para el  material de laboratorio lavado 
(1ª empezando por la derecha)


Neveras 
(Nevera de Hematología, 2ª por la izquierda)


 Centrifuga para tubos de ensayo


   
 Centrifugas 



Centrifugas 



Compañeras utilizando el espectrofotómetro



Aprendiendo a utilizar el espectrofotómetro 
para utilizarlo en Hematología ( realizado en 
Recogida, preparación, y conservación de muestras biológicas
 humanas no en Hematología).


Hemos creado este blog con el objetivo de que indaguéis y aprendáis conocimientos acerca de esta "sanguinolenta"ciencia. Esperamos que nuestras prácticas y protocolos os sean útiles, atractivos e interesantes


Un atento saludo de los alumnos de Hematología del curso 2014-2015.














jueves, 12 de marzo de 2015

INTRODUCCIÓN A LA HEMOSTASIA


                                     

                                         


Durante todo el mes de marzo, en nuestro ciclo, hemos estado aprendiendo a  saber como realizar correctamente todo tipo de pruebas para saber valorar tanto cuantitativamente, como cualitativamente, todos los procesos constituyentes de la HEMOSTASIA, o comúnmente llamada COAGULACIÓN.Sobre todo, desde un enfoque clínico. Por dicho motivo, iniciamos nuevo bloque en nuestro blog de clase, con el primordial objetivo de poder transmitiros de una forma amena, y muy representativa, todo lo que nuestras profesoras nos han ido transmitiendo durante este mes. Esperamos que os guste, y os sea de utilidad. 


Un atento saludo, los alumnos de HEMATOLOGÍA del I.E.S Cantábria.



ESQUEMA DEL OBJETIVO PRINCIPAL DE CADA FASE DEL PROCESO DE LA HEMOSTASIA


Seguro que alguna vez habéis visto algún episodio, o leído algún libro  de "ERASE UNA VEZ EL CUERPO HUMANO". Esa magnífica  serie o magníficos libros, con los cuales/ la cual,  aprendimos biología cuando éramos pequeños. 
En ésta imagen, se puede observar el momento de la ESTABILIZACIÓN DEL COAGULO DE FIBRINA AL FINAL DE LA  COAGULACIÓN SECUNDARIA.

martes, 10 de marzo de 2015

COAGULÓMETRO

BLOQUE DE HEMOSTASIA 

INSTRUMENTO DE TRABAJO:


                                      Coagulometro 

  “Clot 1 Rail"    



Imagen de  la estructura del  aparato





Observaciones:
                                  
                --> Atemperar el plasma a 37˚C antes de usarlo.
                  
             --> Todas las pruebas se hacen por duplicado.
                       
                         --> Marcar e indicar la caducidad de los productos al usarlos por 
                 1ª vez.
                  
              --> Respetar los tiempos.
                  
              --> Y sobre todo… leer el protocolo!!

    domingo, 8 de marzo de 2015

    MUESTRAS Y REACTIVOS EN HEMOSTASIA

                                                 


                      BLOQUE DE 

                               HEMOSTASIA  

                                   


         TOMA,CONSERVACIÓN Y TIPO DE MUESTRAS; 
                      REACTIVOS

        

    OBTENCIÓN DE LA MUESTRA


              --> Estar en ayunas la mañana que se realicen las pruebas.

              --> Evitar tomar medicación las dos semanas previas a las pruebas, sobre todo la que
                    puedan  interferir directamente en las mismas; y si se tiene que tomar obligatoriamente,
                    se ha de  informarlo  previamente.

                               -  Algunos  medicamentos que pueden interferir son:
                                          ácido acetil salicílico, heparina, anticoagulantes  orales...

                      NOTA: tener en cuenta que una muestra se puede contaminar con heparina 
                                   cuando se  obtiene a  través de un catéter de permanencia, por lo cual
                                    se tendrá que  lavar  previamente con suero fisiológico a presión, y
                                    descartar los 5 ml de sangre.


               



    CATÉTER

           -->  Las muestras deben ser de sangre entera, recogidas de manera antiséptica por medio
                   de punción venosa, mediante un sistema de tubo al vacío con citrato trisódico
                   en una proporción de 1:9.

                       


     Sistema de extracción de sangre al vacío mediante el
    uso de un tubo con citrato(  azul), normalmente utilizado
    para pruebas de coagulación 

            NOTA:  si un paciente posee un hematocrito con un valor más bajo o más alto 
                                       de lo normal, se  debería hacer un reajuste de la concentración de                                                        anticoagulante.

    PROCESAMIENTO DE LA MUESTRA
                 
                    En HEMOSTASIA se trabajan con cuatro tipo de muestras:
                                           
                                        --> PLASMA POBRE EN PLAQUETAS
                                             
                                        --> PLASMA RICO EN PLAQUETAS
                                             
                                        --> PLASMA ABSORBIDO ( AUSENTE DE FACTOR IX)
                                             
                                        --> SUERO

         ¿Qué es el PLASMA?

         Líquido en el cual se encuentran inmersos las células sanguíneas, formado por
         múltiples sustancias, entre ellas, todos los factores plasmáticos que intervienen en la
         coagulación. Ejemplos  de ellos son: fibrinógeno, Factor XII o de contacto, precalicreína,
         etc.



                    

                                       PLASMA POBRE EN PLAQUETAS

                Se obtiene mediante  centrifugación  de la muestra con citrato durante 10 minutos 
                 a 3000 rpm tan pronto como sea posible después de la extracción de la
                 misma. Separar el sobrenadante formado, colocándolo en un tubo anticoagulado.

                                USO: utilizado en la mayoría de las pruebas de coagulación, ya que , nos
                                           interesa más conocer  la actividad y presencia de los factores que                                                        intervienen en coagulación, y como se forma el coagulo de fibrina,
                                           que los  factores y estado de las plaquetas. Por eso mismo las
                                           eliminamos, pero dejando una cierta cantidad, porque también son
                                           necesarias para que este proceso se lleve a cabo.


                                        PLASMA RICO EN PLAQUETAS

                Se obtiene centrifugando la muestra de sangre entera anticoagulada con
               citrato durante 10 minutos a 1000 rpm tan pronto como sea posible después de
               su obtención.Se separa el sobrenadante formado, colocándolo en un tubo                                               anticoagulado.


                                       



                               



           PLASMA ABSORBIDO ( SIN FACTOR IX).

                 Se puede obtener mediante el siguiente proceso:

                   --> Añadir una parte de gel de hidróxido de aluminio a 9 partes de plasma 
                           citratado.
                    
                   --> Agitar la muestra.
                   
                   --> Incubar durante 5 minutos a 37 grados.
                    
                 --> Centrifugar durante 5 minutos a 3000 rpm.
                     
                 --> Decantar el sobrenadante ( éste es el plasma absorbido) con una pipeta Pasteur
                            para un tubo apropiado.
                                   USO: se utiliza en la prueba de mezclas ( se redactará más adelante).



           SUERO

        Es una sustancia de apariencia equivalente al plasma, con la gran diferencia de  que carece 
        de las proteínas involucradas en la coagulación ( en su mayor parte, fibrinógeno).
        Se obtiene dejando una muestra de sangre entera en un tubo de vacío sin anticoagulante,
        una vez  que se forma el coágulo, se extrae el líquido sobrenadante.

            USO:  se utiliza  en la prueba de mezclas, en la determinación de Antitrombina III,
                        y en la detención de Productos de la Degradación de la Fibrina/Fibrinógeno.

    En esta imagen se observa, el SUERO (líquido amarillo), y el COÁGULO formado
    por: hematíes. plaquetas y leucocitos atrapados en una especie de maya de FIBRINA


     CONSERVACIÓN DE LAS MUESTRAS

          Si las pruebas no se pueden realizar en un periodo de una 30 minutos después de su extracción,
          se conservará en nevera para evitar la pérdida de algunos factores de la coagulación.

          El plasma conseguido, a partir de sangre entera, tiene que ser utilizado antes del fin de las 4 
          horas  siguientes a la extracción . si esto no es posible, debe conservarse refrigerándolo
          durante 12 horas, o se conserva durante 1 mes congelándolo rápidamente a -20º C.


     USO DE REACTIVOS

         Cada prueba requerirá unos reactivos específicos.

            Las pruebas de factores requerirán la adición de cloruro cálcico ( viene incluido en el 
            lote de la prueba específica de la coagulación que lo necesita). Esto es debido a que
            el citrato trisódico, el anticoagulante utilizado en estas pruebas, es quelante* del calcio 
           iónico (Ca++) o Factor IV, que se encuentra disuelto en el plasma, y es necesario para
           que se lleve a cabo la cascada de la coagulación, y por tanto para la formación del
            coágulo de fibrina. Por lo tanto,  habrá que suministrarlo.

          Además, suelen encontrarse liofilizados*. Para la rehidratación se seguirán las pautas que
          en el protocolo nos establezca el fabricante. Si utilizamos agua para rehidratarlo, es mejor
          que esta sea destilada, ya que la del grifo podría contener restos orgánicos que interfieran en
          la pruebas al contaminarlo.

          Una vez que se hace la prueba no se debe reintegrar a los botes las cantidades sobrantes,
          porque se podría contaminar el reactivo que no se ha utilizado.


    Estructura molecular del Citrato Trisódico



    VOCABULARIO:
          
           * Quelante. Sustancia que forma complejos fuertes con iones de metales pesados.
                              estos  complejos se los conoce como quelatos, y generalmente evitan que 
                              estos metales pesados puedan reaccionar. 

                                                                        

    * Liofilización:


    miércoles, 18 de febrero de 2015

    PROTOCOLOS DE ALGUNAS TINCIONES 


    TINCIÓN DE GIEMSA


       



            1. Fijar la extensión sanguínea, cubriéndola abundantemente con                       metanol5 minutos.
            
            2. Eliminar el metanol, volcando el portaobjetos.

            3Cubrir la extensión con colorante de Giemsa y dejar actuar 20-25                   minutos.
            
            4. Lavar la extensión suavemente con agua destilada, por medio del                 frasco lavador.

            5. Dejar secar la preparación al aire o con secador a temperatura 
                suave.

      TINCION DE MAY GRÜNWALD-GIEMSA 

      (PANÓPTICO DE PAPPENHEIM)




             1. Cubrir la extensión con una buena cantidad de May-Grünwald 
                 5 minutos.
             
              2 .Lavar con agua del grifo.
             
              3. Cubrir con  colorante de Giemsa, dejando actuar 15-20 minutos.
             
              4. Lavar el portaobjetos con agua del grifo o solución tamponada 
                  a pH 7,2.
             
              5. Dejar secar la preparación al aire o con secador a temperatura 
                  suave.


        TINCION DE WRIGHT




                  1. Cubrir con el colorante (contando las gotas) de Wright y 
                      dejar actuar 5 minutos (fijación).
                  
                  2. Añadir sobre la preparación la misma cantidad de agua 
                      destilada  y dejar actuar 25 minutos.

                  3. Lavar la preparación con agua destilada y dejar secar al aire o 
                      con secador.


          TINCION PANÓPTICA RAPIDA





              
           1. Preparar los reactivos en tres cubetas de tinción sucesivas.
                            
                             Cubeta nº1fijador (solución alcohólica de triarilmetano)
                             
                             Cubeta nº 2=  colorante 1 (Acido: solución tamponada de                                                        xanteno)
                   
                             Cubeta nº 3colorante 2 (Básico: solución tamponada de                                                     tiazina)

                       
                        2. Los frotis bien secos se colocan en las cestillas de tinción.

                        3. Sumergir la cestilla con los frotis en la cubeta nº 1, durante 7                        segundos ( se hacen 7 inmersiones de 1 sg cada vez). 
                             Escurrir sobre el papel el cestillo.

                        4. Sumergir la cestilla en la cubeta nº 2, durante 7 sg ( 7                                  inmersiones  de 1 sg cada vez), y dejar 
                             escurrir.

                        5. Sumergir la cestilla en la cubeta nº 3 durante otros 7 sg de la                       misma forma.

                        6. Lavar la cestilla con los frotis teñidos bajo el grifo, hasta que                         salga el agua limpia.

                        7. Dejar secar al aire o con secador a temperatura suave.

          martes, 17 de febrero de 2015

          TINCIONES HEMATOLOGICAS DE RUTINA(PANÓPTICAS)


                    Se pueden dividir en dos grupos:
                                
                       1.Tinción por decantación libre: GiemsaMay Grünwald-GiemsaWright. 

                       2.Tinción por inmersión: panóptico rápido.

             

            Material para las tinciones por decantación




            CRISTALIZADOR

                                             



               PARRILLAS DE TINCIÓN


                                              
                                                                                                                                 


                                                                           
                                                               PAPEL DE FILTRO
                                             
                                                 
                                



              PIPETAS PASTEUR





                FRASCO LAVADOR




                Material para la tinción por inmersión



                CUBETAS DE TINCIÓN 
                (COPLIN)

                                

                                   

                 CESTILLOS PARA PORTA-OBJETOS




                Técnica de tinción



                                --> Echar un poco de agua en el cristalizador, para que los colorantes                                     no se  peguen al fondo.

                               --> Colocar las parrillas de tinción sobre el cristalizador.


                              --> Colocar los frotis sanguíneos debidamente identificados y bien secos sobre                         las parrillas de tinción.


                               --> Proceder a la técnica de tinción según el protocolo de cada una.